熒光定量PCR：簡介，原理，應用
熒光定量PCR簡介
熒光定量PCR檢測技術誕生至今已10多年的時間，而其應用一直都沒廣泛展開，究其原因，無外乎受制于相關儀器、試劑和技術的發展。近期，尤其是08年以來，儀器和試劑是遍地開花，這也使科研人員均躍躍欲試，都想借此技術使自己的研究能突飛猛進，發展勢頭通過查找每年所發表的文章數可一目了然。據有關統計，在 Medline 數據庫中，用“Taqman” 或 ”real time PCR” 作為關鍵詞檢索，1996 年是19 篇，1999 年157 篇，到2003 年就高達2984 篇，2009年會是多少呢？我們不得而知。但其迅猛的發展勢頭卻是不可更改的，本公司真誠希望能和眾多研究人員共同努力，抓住這一大好時機，為科研事業的發展貢獻自身的力量。基于這一目標，本公司長期以來對熒光定量PCR，無論是技術還是多年來的產品，均進行了深入地研究，并及時推出更加優異的熒光定量 PCR技術服務。
熒光定量PCR原理
熒光定量PCR最早稱TaqMan PCR，后來也叫Real-Time PCR，是美國PE（Perkin Elmer）公司1995年研制出來的一種新的核酸定量技術。該技術是在常規PCR基礎上加入探針或相應的熒光染料來實現其定量功能的。其原理：隨著PCR反應的進行，PCR反應產物不斷累計，熒光信號強度也等比例增加。每經過一個循環，收集一個熒光強度信號，這樣我們就可以通過熒光強度變化監測產物量的變化，從而得到一條熒光擴增曲線圖。
一般而言，熒光擴增曲線可以分成三個階段：熒光背景信號階段，熒光信號指數擴增階段和平臺期。在熒光背景信號階段，擴增的熒光信號被熒光背景信號所掩蓋，無法判斷產物量的變化。而在平臺期，擴增產物已不再呈指數級的增加，PCR 的終產物量與起始量之間沒有線性關系，根據最終的 PCR 產物量也不能計算出起始 拷貝數。只有在熒光信號指數擴增階段， PCR產物量的對數值與起始模板量之間存在線性關系，我們可以選擇在這個階段進行定量分析。為了定量和比較的方便，在實時熒光定量 PCR 技術中引入了兩個非常重要的概念：熒光閾值和 CT值（如下圖所示）。
熒光域值（threshold）
是在熒光擴增曲線上人為設定的一個值，它可以設定在熒光信號指數擴增階段任意位置上，但一般熒光域值的缺省設置是PCR反應前3-15個循環熒光信號標準偏差的10倍，即：threshold。
Ct 值(zhi)：是指每個反應(ying)管內的熒光信號到達設定域值(zhi)時(shi)所經歷的循(xun)環數。
Ct值與起始模板的關系：
研究表明，每個模板的Ct值與該模板的起始拷貝數的對數存在線性關系，起始拷貝數越多，Ct值越小。利用已知起始拷貝數的標準品可作出標準曲線，其中橫坐標代表起始拷貝數的對數，縱坐標代表Ct值如下圖所示。因此，只要獲得未知樣品的Ct值，即可從標準曲線上計算出該樣品的起始拷貝數。
熒光定量檢測
熒光定量檢測根據所使用的標記物不同可分為熒光探針和熒光染料。熒光探針又包括Beacon技術（分子信標技術，以美國人Tagyi為代表）、 TaqMan探針（以美國ABI公司為代表）和FRET技術（以公司為代表）等；熒光染料包括飽和熒光染料和非飽和熒光染料，非飽和熒光染料的典型代表就是現在最常用的SYBR GreenⅠ；飽和熒光染料有EvaGreen、LC Green等。
嵌合熒(ying)光染料(liao)法（SYBR GreenⅠ）
SYBR Green I是熒光定量PCR最常用的DNA結合染料，與非特異性結合。在游離狀態下，SYBR Green I發出微弱的熒光，但一旦與雙鏈DNA結合，其熒光增加1000倍。所以，一個反應發出的全部熒光信號與出線的雙鏈DNA量呈比列，且會隨擴增產物的增加而增加。
SYBR Green I熒光染(ran)料與DNA雙鏈的結合
雙鏈DNA結合染料的優點：實驗設計簡單，僅需要2個，不需要設計探針，無需設計多個探針即可以快速檢驗多個基因，且能夠進行熔點曲線分析，檢驗擴增反應的特異性，低的初始成本，通用性好，因此國內外在科研中使用比較普遍。
熒光探針法（Taqman 技術）：PCR擴增時，加入一對引物的同時再加入一個特異性的熒光探針。該探針為一直線型的寡核苷酸，兩端分別標記一個熒光報告基團和一個熒光淬滅基團，探針完整時，報告基團發射的熒光信號被淬滅基團吸收，PCR 儀檢測不到熒光信號； PCR擴增時（在延伸階段），Taq 酶的 5' － 3' 切酶活性將探針酶切降解，使報告熒光基團和淬滅熒光基團分離，從而熒光監測系統可接收到熒光信號，即每擴增一條 DNA 鏈，就有一個熒光分子形成，實現了熒光信號的累積與 PCR 產物形成完全同步，這也是定量的基礎所在。其過程如下圖所示
熒光定量PCR的應用
分子生物學研究
1.核酸定量分析。 對傳染性疾病進行定量定性分析，病原或含量的檢測 , 比如近期流行的甲型H1N1流感， 動植物基因拷貝數的檢測，RNAi 基因失活率的檢測等。
2.差異分析。 比較經過不同處理樣本之間特定基因的表達差異 ( 如藥物處理、物理處理、化學處理等 ) ，特定基因在不同時相的表達差異以及cDNA或差顯結果的確證。
3. 檢測。檢測對于研究個體對不同疾病的易感性或者個體對特定藥物的不同反應有著重要的意義，因分子信標結構的巧妙性，一旦SNP 的序列信息是已知的，采用這種技術進行高通量的 SNP 檢測將會變得簡單而準確。
4.檢測。甲基化同人類的許多疾病有關，特別是， Laird 報道了一種稱作 Methylight的技術，在擴增之前先處理 DNA ，使得未甲基化的變成尿嘧啶，而甲基化的胞嘧啶不受影響，用特異性的引物和 Taqman探針來區分甲基化和非甲基化的 DNA ，這種方法不僅方便而且靈敏度更高。
醫學(xue)研究
5.產前診斷：人們對遺傳性物質改變引起的遺傳性疾病還無法治療，到目前為止，還只能只能通過產前監測，減少病嬰出生，以防止各類遺傳性疾病的發生，如為減少X連鎖遺傳病患兒的出生，從孕婦的外周血中分離胎兒DNA，用實時熒光定量PCR檢測其Y性別決定區基因是一種無創傷性的方法，易為孕婦所接受。
6.病原體檢測：采用熒光定量PCR檢測技術可以對淋球菌、沙眼衣原體、解脲支原體、人類乳頭瘤病毒、單純皰疹病毒、人類免疫缺陷病毒、肝炎病毒、流感病毒、結核分枝桿菌、EB病毒和等病原體進行定量測定。與傳統的檢測方法相比具有靈敏度高、取樣少、快速簡便等優點。
7.藥物療效考核：對乙型肝炎病毒 (HBV)、丙型肝炎病毒 (HCV) 定量分析顯示：病毒量與某些藥物的療效關系。HCV高水平表達，干擾素治療作用不敏感，而HCV低滴度，干擾素作用敏感；在拉米夫定治療過程中，HBV- DNA的血清含量曾有下降，隨后若再度上升或超出以前水平，則提示病毒發生變異。
8.基因檢測：盡管腫瘤發病的機理尚未清楚，但相關基因發生是致癌性轉變的根本原因已被廣泛接受。癌基因的表達增加和突變，在許多腫瘤早期就可以出現。實時熒光定量 PCR不但能有效地檢測到基因的突變，而且可以準確檢測癌基因的表達量。目前用此方法進行過酶hTERT基因、慢性粒細胞性WT1基因、腫瘤 ER基因、PSM基因、腫瘤相關的病毒基因等多種基因的表達檢測。
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